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变黄、变粉?蛋白原液颜色形成机理与上游控制策略

7 月 14, 2026

近年来,随着皮下注射制剂和高浓度DS(Drug Substance,原液)越来越常见,蛋白颜色问题正受到越来越多关注。对于注射用蛋白药物而言,颜色不仅是外观属性,更可能反映氧化修饰、糖化反应、金属离子作用及氧化还原状态变化等质量风险。颜色的变化往往是工艺状态极为直观和敏感的信号之一,也逐渐成为工艺开发和质量研究中的重要关注点。

WHY 为什么要关注蛋白颜色?

根据药典要求,注射用蛋白药物需满足外观和颜色一致性要求。颜色已被纳入产品质量评价体系,属于重要的产品外观属性。

但相比法规要求,更值得关注的是,蛋白颜色往往关联着蛋白自身质量变化。不同颜色背后可能对应不同的潜在风险,例如黄色可能与Trp氧化相关,棕色可能与糖化及AGE形成相关,粉红色可能与VB12结合及二硫键还原相关,而棕红色则可能提示金属离子络合。颜色加深也常常意味着ROS升高和氧化应激增强。

培养基组分、ROS与翻译后修饰共同驱动DS颜色形成
图1. 培养基组分、ROS与翻译后修饰共同驱动DS颜色形成
从目前公开报道来看,蛋白颜色形成主要涉及三条路径:ROS介导的Trp氧化、AGE相关糖化修饰,以及VB12结合导致的粉红色显色。其中不同机制往往并非独立存在,而是在培养过程中相互影响、共同作用。

WHAT 蛋白颜色是如何形成的?

机制一:Trp氧化——黄色和黄褐色的重要来源

色氨酸(Trp)氧化是蛋白药物黄变或褐变中非常常见、需要优先排查的机制之一。

在细胞培养、纯化、储存或光照过程中,ROS、金属离子和光照都可能促进Trp氧化。Trp经多步氧化后可形成犬尿氨酸(Kyn)、N-甲酰犬尿氨酸(NFK)等有色降解产物,这些产物会使蛋白溶液呈现黄色或黄褐色。

铁离子在这里扮演了一个“双刃剑”角色:一方面,铁是CHO细胞生长和代谢所需的重要微量元素;另一方面,铁也可能参与Fenton反应,促进ROS生成,从而增加氧化应激和产品颜色风险。

因此,看到黄色或黄褐色DS时,不应只问“颜色能不能去掉”,而要进一步追问:

  • 是否存在Trp氧化升高?
  • 是否存在高铁培养基或铁源差异?
  • 是否有光照、ROS或长期高密度培养带来的氧化压力?
  • 颜色变化是否伴随酸性变异体增加?
Trp氧化可生成Kyn和NFK,推动蛋白溶液黄变或褐变
图2. Trp氧化可生成Kyn和NFK,推动蛋白溶液黄变或褐变

机制二:AGE糖化——容易被低估的棕黄色来源

并不是所有棕黄色都来自氧化。AGE(Advanced Glycation End Products,高级糖化终产物)也是一个重要来源。

在CHO细胞培养过程中,还原糖或碳水化合物降解产生的二羰基副产物,可与蛋白质赖氨酸、精氨酸或N端氨基发生非酶促反应,逐步形成AGE。部分AGE产物具有可见光区吸收或荧光特征,可能导致蛋白呈现黄色至棕黄色。

有研究通过质谱分析不同颜色强度的CHO来源重组抗体,发现多个AGE修饰与产品颜色呈强相关,其中CML(ε-羧甲基赖氨酸)进一步通过ELISA得到验证,提示AGE至少部分参与了CHO来源抗体的颜色形成。

这意味着,颜色分析不能只停留在“氧化”一个维度。对于高糖补料、长周期Fed-batch、高密度培养或糖代谢压力较大的项目,应同时考虑:

  • 还原糖暴露时间
  • 补糖策略与残糖水平
  • AGE或CML水平
  • 酸性变异体变化
  • 氧化与糖化是否存在协同效应
高级糖化终产物(AGE)引起颜色变化
图3. 高级糖化终产物(AGE)引起颜色变化

机制三:VB12/OH-Cbl——粉红色的关键线索

与黄色、棕色不同,粉红色往往更“显眼”,也更容易引发客户关注。

培养基中的维生素B12(钴胺素)存在多种形式,其中氰钴胺(CN-Cbl)最稳定,而羟钴胺(OH-Cbl)则被认为是导致蛋白显色的关键分子。研究表明,培养基中的CN-Cbl在光照条件下会逐渐转化为OH-Cbl,而OH-Cbl能够与蛋白发生结合,从而赋予产品粉红色外观。

这解释了一个常见现象,培养阶段看起来正常,但培养基、补料或中间体经历光照暴露后,最终产品可能出现发粉。

需要注意的是,

仅有VB12或仅有OH-Cbl本身并不一定导致产品发粉。Derfus GE等2014研究发现,粉红色形成还需要另一个重要条件——抗体发生二硫键还原。只有当“还原态抗体”和“羟钴胺(OH-Cbl)”同时存在时,最终产品才会呈现典型的粉红色。

因此,除了培养基成分之外,Harvest过程同样是颜色控制的重要环节。

对于VB12相关颜色风险,重点不是简单地问“培养基里有没有B12”,而是要问:

  • B12以什么形式存在?
  • 培养基和补料是否避光?
  • 是否存在CN-Cbl向OH-Cbl转化?
  • 收获后体系是否长期处于强还原环境?
  • 细胞破裂是否增加?
OH-Cbl是VB12相关粉红色形成中的关键结合形式
图4. OH-Cbl是VB12相关粉红色形成中的关键结合形式

HOW 上游如何控制蛋白颜色?

颜色控制的核心不是“颜色出来后再处理”,而是尽量在上游和Harvest阶段减少颜色形成。颜色控制不是单点优化,而是培养基组分、ROS、糖代谢和Harvest氧化还原环境的系统平衡。
上游控制策略速查表
上游控制策略速查表

Case 两个典型上游控制案例

Case 1:低铁适应工艺改善DS颜色,同时恢复Titer

铁离子是颜色控制中的典型矛盾点,高铁可能提升细胞生长和表达,但同时也会增加颜色形成风险。为了降低DS风险,研究人员设计了不同铁离子浓度的培养工艺,并结合长期Seed Adaptation(种子细胞适应)进行优化比较:
Seed Adaptation(种子细胞适应)
其中P20代表细胞已经历长期低铁适应培养。

结果1

铁离子浓度升高导致DS颜色逐渐加深。如图5所示,在10 μMFe条件下,DS呈现浅黄色;随着铁浓度增加至20、30、50及110 μM,颜色逐渐加深,由浅黄色向浅棕色转变,提示铁离子水平与产品显色风险呈正相关。虽然铁离子并非直接显色物质,但其诱导的ROS积累可促进Trp氧化,进而形成Kyn和NFK等有色降解产物。

不同铁离子浓度下DS颜色变化
图5. 不同铁离子浓度下DS颜色变化
结果2

长期低铁适应恢复细胞生长和表达能力。如图6,直接降低铁离子虽然能够改善颜色,但研究人员发现,早期低铁工艺(Process A)会出现活细胞密度(VCD)降低和蛋白表达量(Titer)降低的现象,因此研究团队进一步采用长期低铁适应策略,让细胞在20 μM铁离子条件下连续传代至P20。结果显示,Process B在保持较浅DS颜色的同时,VCD和Titer恢复至接近高铁工艺水平。

低铁适应后细胞生长与表达恢复情况
图6. 低铁适应后细胞生长与表达恢复情况
该案例的关键启发是:

1. 直接降低铁离子可以改善颜色,但可能牺牲细胞生长和表达。

2. 长期低铁适应可帮助细胞在低铁条件下恢复较好的生长和生产能力。

3. 颜色控制必须与VCD、Titer、charge variants和其他CQA联合评估。

Case 2:收获阶段二硫键驱动的VB12发粉机制及控制策略

另一个典型案例来自IgG4产品的红色/粉红色问题。

如图7,研究人员比较了正常收获条件(C-HCCF)和促进还原条件(RP-HCCF)下的产品颜色变化。结果显示,即使培养基中含有相同浓度的VB12,只有在发生二硫键还原的条件下,最终产品才出现明显粉红色。这说明VB12本身并不是唯一决定因素,真正的发粉机制是培养基中的VB12与收获阶段二硫键还原共同作用。

收获阶段二硫键还原导致产品发粉,A-C:正常Harvest(C-HCCF)E-G:Reduction-promoting Harvest(RP-HCCF)D和H在还原前后加抗阻剂
图7. 收获阶段二硫键还原导致产品发粉,A-C:正常Harvest(C-HCCF)E-G:Reduction-promoting Harvest(RP-HCCF)D和H在还原前后加抗阻剂
进一步分析发现,当收获过程中细胞破裂增加时,LDH水平升高。LDH本身并不是导致发粉的原因,而是细胞破裂的标志物。真正关键的是,细胞破裂后会释放大量胞内还原体系,包括GSH、Trx和Grx等。这些还原剂会促进抗体二硫键断裂,生成更多游离巯基,从而增加OH-Cbl与抗体结合的机会。因此,收获过程中细胞破裂越严重,产品发粉风险越高。
谷胱甘肽和硫氧还蛋白系统介导抗体二硫键还原
图8. 谷胱甘肽和硫氧还蛋白系统介导抗体二硫键还原
更重要的是,研究表明收获后体系的氧化还原状态并非不可逆,而是可以通过工艺操作进行调控。研究比较了重新通气(Re-aeration)与未通气条件下产品状态的变化。如图9,结果显示,在未通气条件下,培养液DO在2天内迅速降至接近0%,体系逐渐进入强还原环境;而重新通气后,DO始终维持在较高水平,完整抗体比例保持稳定,二硫键降解明显受到抑制。
通气可逆转收获阶段的还原环境
图9. 通气可逆转收获阶段的还原环境

该案例的关键启发是:在实际工艺中,Harvest阶段可能通过以下路径放大发粉风险:

1. 细胞破裂增加;

2. 胞内还原体系释放;

3. 抗体二硫键还原;

4. 蛋白构象或结合位点暴露;

5. OH-Cbl与蛋白结合;

6. 最终DS呈现粉红色或红色。

对应的控制策略也应前移到收获阶段:

  • 缩短Harvest Hold
  • 降低过滤剪切和压力
  • 控制收获液温度和DO
  • 监测LDH或细胞破裂指标
  • 监测完整抗体比例
  • 必要时评估通气或氧化还原调控

Conclusion 颜色是工艺状态的指示灯

从Trp氧化导致的黄变,到AGE糖化带来的棕黄色,再到VB12/OH-Cbl与二硫键还原共同驱动的发粉,蛋白颜色并不是一个简单的外观现象。

它更像是培养体系、培养基组成、氧化还原状态和分子修饰共同留下的工艺指纹。

对于上游工艺开发人员而言,颜色真正值得关注的,不只是“这一瓶是不是更黄、更粉”,而是它背后提示了什么:

  • 是否有ROS升高?
  • 是否有Trp氧化或AGE增加?
  • 是否存在VB12/OH-Cbl结合?
  • Harvest阶段是否发生二硫键还原?
  • 培养基组分是否需要重新平衡?
  • 颜色变化是否伴随其他CQA变化?

相比在下游阶段尝试“去除颜色”,更有效的策略往往是在上游和Harvest阶段提前预防:优化培养基组分、控制ROS、管理光照暴露、降低糖化风险,并稳定收获阶段氧化还原环境。

颜色不是结果,而是信号;不是终点,而是工艺状态的直观指示灯。

当蛋白原液开始变黄、变棕或发粉时,它提醒我们的可能不是一个外观问题,而是一条值得追踪的工艺线索。

延伸阅读:见本期另一篇文章《同样是VB12,为什么供应商A和B颜色不同?》,本文进一步通过VB12供应商对比案例,分析原材料粒径、晶型及颜色差异对培养基外观的影响。

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